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脂肪酶(LPS)测试盒 BES-BK2427B

脂肪酶(LPS)测试盒

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脂肪酶(LPS)测试盒

注意:正式测定之前选择 2-3 个预期差异大的样本做预测定。

测定意义:

LPS 又称甘油酯水解酶,催化甘油三酯水解生成脂肪酸和甘油(或者甘油二酯和单酯)。LPS广泛的存在于各种生物中。血清中 LPS 的异常增高常见于胰腺炎和胰腺癌。

测定原理:

LPS 催化油酯水解成脂肪酸,利用铜皂法测定脂肪酸生成速率,即可计算 LPS 活性。

自备仪器和用品:

研钵、台式离心机、震荡混匀器、可见分光光度计、1mL 玻璃比色皿、可调式移液枪、甲苯 100mL、冰和蒸馏水。

试剂组成和配制:

试剂一:液体 90mL×1 瓶,4℃保存。

试剂二:液体 14mL×1 瓶,4℃保存。每次使用前用震荡混匀器剧烈震荡 20min。

试剂三:甲苯 100mL×1 瓶,4℃保存(自备)。

试剂四:液体 20mL×1 瓶,4℃保存。

标准品:液体 10μL×1 瓶,10 µmol/mL 的标准溶液,4℃保存。临用前加入 3.168 mL 甲苯,充分溶解。

粗酶液提取:

1. 组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 试剂一)进行冰浴匀浆。12000g,4℃离心 10min,取上清置冰上待测。

2. 细菌、真菌:按照细胞数量(104 个):试剂一体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入 1mL 试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3 秒,间隔 7秒,总时间 3min);然后 12000g,4℃,离心 10min,取上清置于冰上待测。

3. 血清等液体: 直接检测。

LPS 测定操作:

1. 分光光度计预热 30 min 以上,调节波长到 710 nm,蒸馏水调零。

2. 试剂一和试剂二置于 37℃水浴预热 30min 以上。

2. 在 5mL EP 管中依次加入下列试剂

2021091609583940834

37℃振荡反应 5 min 后,静置 5min,取 800μL 上层液加入 1 mL 玻璃比色皿,于 710nm 处测定吸光值。

注意:空白管和标准管只需测定一次。

LPS 活性计算公式:

1. 组织、细菌或细胞 LPS 活性

(1)按照蛋白浓度计算

活性单位定义:37℃中每毫克蛋白每分钟水解橄榄油生成 1μmol 脂肪酸为一个酶活单位。

LPS (μmol/min/mg prot) = [C 标准品×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管- A 空白管)]×V 反总÷(Cpr×V 样)÷T=16×[(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管- A 空白管)]÷Cpr

(2)按照样本质量计算

活性单位定义:37℃中每克组织每分钟水解橄榄油生成 1μmol 脂肪酸为一个酶活单位。

LPS (μmol/min/g 鲜重) = [C 标准品×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管- A 空白管)]×V 反总÷(W×V 样÷V 样总)÷T=16×[(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管- A 空白管)]÷W

(3)按照细菌或者细胞数量计算

活性单位定义:37℃中每 104个细胞每分钟水解橄榄油生成 1μmol 脂肪酸为一个酶活单位。

LPS (μmol /min/104cell) = [C 标准品×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管- A 空白管)]×V 反总÷(细胞数量×V 样÷V 样总)÷T=16×[(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管- A 空白管)]÷细胞数量

2. 血清等液体 LPS 活性

活性单位定义:37℃中每毫升血清每分钟水解橄榄油生成 1μmol 脂肪酸为一个酶活单位。

LPS (μmol /min/mL) = [C 标准品×(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管- A 空白管)]×V 反总÷V样÷T=16×[(A 测定管-A 空白管)÷(A 标准管- A 空白管)]

C 标准品:10 µmol/mL;V 反总:反应总体积,2mL;V 样:反应中加入样本体积,0.125mL;V 样总:加入提取液体积,1mL;Cpr:上清液蛋白质浓度,mg/mL,需要另外测定,建议使用本公司 BCA 蛋白质含量测定试剂盒;W:样本质量,g;T:催化反应时间,10 min。


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