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SuperEV 超纯尺寸排阻色谱柱 1.0mL BES2006EXO

是由不同细胞分泌的直径 30-150nm 的胞外膜性囊泡 (Extracellular Vesicles,EVs)

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¥ 2500.00 /盒
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SuperEV 超纯尺寸排阻色谱柱 1.0mL 

保存与应用 

【保存条件】 

常温或 4℃运输,收到试剂盒后直立放置,置于 2-8℃保存,有效期 12 个月。请 勿冷冻! 

【应用范围】

本产品只用于科学研究,不能用于临床诊断。 

  1. 本产品是基于尺寸排阻色谱原理,根据被分离组分的分子大小实现胞外囊泡 (EVs)的分离和纯化。

2.适合大部分生物样品(血清、血浆、尿液等)和细胞培养上清中分离和纯化 EVs。 

3.分离的 EVs 可用于鉴定(NTA,TEM,FACS 和 Western Blot),蛋白质谱分析, RNA 提取和测试,高通量测序,体外标记和修饰及细胞实验等。

产品介绍

外泌体(Exosome)是由不同细胞分泌的直径 30-150nm 的胞外膜性囊泡 (Extracellular Vesicles,EVs)。外泌体普遍存在于多种体液中,其内容物丰富, 包括蛋白质、脂质和核酸等,在细胞间信息交流中发挥着重要作用,主要参与免 疫抗原呈递,神经递质传递,脂类代谢及细胞信号转导等过程,并与多种疾病的 发生、发展、治疗及预后密切相关。 

尺寸排阻色谱法(Size Exclusion Chromatography,SEC)被认为是从不同样 本中分离和纯化细胞外囊泡(EVs)的最佳方法之一,因为它能够快速而有效地 将 EVs 从复杂样本中分离出来,并能保持 EVs 的原始形状和生物学功能。我们 开发了用于分离 EVs 的不同类型的 SEC 柱:SuperEV0.5,SuperEV1.0 和 SuperEV3.0,适合不同样本和体积的 EVs 分离。此外,我们还提供 SEC 柱和浓 缩柱的不同组合,既可以从更大体积的细胞培养上清或尿液中分离 EVs,同时又 可以将 SEC 柱分离的 EVs 进一步浓缩和纯化,提供完整的纯净 EV 的解决方法, 适合于 EVs 的工业化制备。
【主要特性】

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* 建议样品上样量为 1.0mL,以获得高纯度和高回收率的 EVs,上样量最高可达 1.5mL, 但后面馏分的 EV 纯度略有下降,具体参考“实验数据分析”中样品上样体积研究。
【主要特点】
 耗时短,分离时间约 15 分钟。
 操作简便,无需特殊设备。
 重复性好,可重复使用 5 次。
 操作温和,最大程度保持胞外囊泡(EVs)完整形态结构和生物学功能;
 回收率高,大于 74%。
 纯度高,总蛋白去除约 99.9%,脂颗粒去除约 90%。
 操作过程仅加入 PBS 缓冲液,对下游实验无干扰。

试剂盒组成和说明

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需自备试剂 

1. PBS 缓冲液,经 0.22μm 滤膜过滤
2. 纯水,经 0.22μm 滤膜过滤
3. 20%乙醇水溶液
4. 超滤管(截留分子量为 100KD)
5. 收集管(烧杯,普通离心管)

操作方法

1. 柱平衡
从冰箱中取出 SuperEV 1.0 超纯柱,垂直固定,如果无合适的垂直固定装置, 可从我公司购买配套的固定组件(货号:HCS1030 )。室温放置至少 30 分钟, 使柱子温度充分平衡到室温(18-28℃),温度过高过低,柱体可能会引入气泡, 影响分离效果。使用的 PBS 缓冲液,同样平衡至室温。
注意:
 柱子平衡至室温前,不要打开顶盖和底盖。
 柱子第一次使用,上筛板与填料表面可能存在间隙,这是储存过程中填料沉降造成的, 不影响分离性能,实验前将筛板向下垂直推到填料表面即可。  尽量用当天新配的 PBS, 经 0.22μm 膜过滤,避免引入微生物和颗粒物,以免堵塞筛板。

将收集管(烧杯或普通离心管)放置在柱子下方,先打开顶盖,用移液器吸弃上方的保存液,加入约 10mL 超纯水(经 0.22μm 滤膜过滤),取下底盖冲洗柱子,待液体全部进入筛板,出口无液体流出,继续加入 40mL PBS 冲洗。整个冲洗过程始终保持顶部筛板湿润,避免柱体变干。冲洗完成后,盖上底盖,加入少PBS 等待后续操作

1. 样本预处理
样品上样量

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样品处理
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3. 样品上样和 EVs 收集

用移液器吸弃筛板上方的 PBS,取下柱子底盖,在筛板上方加入不超过 1.5mL(最适 1.0mL)的样品,柱子下方放置 15mL 离心管进行第 1 馏分的收集。 待样品全部进入筛板后,再加入一定量的 PBS(PBS 量=8mL-样品上样量)。待 液体全部进入筛板下方,出口无液体流出,收集完毕。收集的第 1 馏分为空隙体 积,大约 8mL,该馏分不含 EVs。

注意
 加入样品后,必须等所有样品进入筛板后,才能继续加入 PBS,避免样品被稀释。
 加入 PBS 的量为 8.0mL-样品上样体积,如上样量为 1.0mL 时,加入 PBS 7.0mL,上 样量为 1.5mL 时,加入 PBS 6.5mL。
继续加入 PBS 进行洗脱,用 1.5mL 离心管收集馏分。每次加入 1.0mL PBS, 待洗脱液全部进入筛板后,出口无液体流出时,该馏分收集完毕。再加入下一个 1.0mL PBS 进行收集。每个馏分收集体积为 1.0mL。EVs 主要集中在馏分 2-4, 总体积约为 3.0mL。
注意
 整个洗脱过程始终保持顶部筛板湿润,避免柱体变干。
 不同类型样品可能会有不同的洗脱谱和纯度,建议初次使用时,对收集的馏分做 EVs 和蛋白浓度测定。
4. 柱体冲洗
含 EVs 的馏分收集完毕后,用不少于 36mL PBS 对柱体进行冲洗,冲洗后的 柱子可直接用于下一个样品处理,或加入保存液,2-8℃储存。
保存液:20%乙醇或 0.05%(W/V)叠氮钠水溶液。 注意:当分离的 EVs 馏分用于 RT-PCR 或高通量测序时,为避免交叉污染,建议一根柱子 只用一次或仅重复用于同一样品。
5. 清洗和再生
变性蛋白或脂蛋白在柱子冲洗过程中可能无法完全被洗脱,积累过多会对分 离的纯度产生影响,可按以下方法进行再生:24 mL 0.5M NaOH 清洗,然后用 PBS 冲洗柱子,直至流出液 pH 为中性,一般需 50-70mL PBS 缓冲液。
注意:当柱子颜色有变化或流速明显下降时,建议进行清洗和再生。
6. EVs 馏分浓缩(富集)
收集到的 EVs 馏分可做 EVs 浓度和蛋白浓度直接测定,根据实验需要决定 是否浓缩或富集。若需要浓缩或富集,建议采用截留分子量为 100KD 超滤管, 2,000×g 离心浓缩,如 Millipore Amicon Ultra-15ml (MWCO 100kD) 或 Sartorius Vivaspin 4/15 ml (MWCO 100kD),也可从我公司直接购买配套的 15mL 超滤管,或“细胞培养上清外泌体浓缩试剂盒”进行浓缩。

用途:该产品仅验使用,未经允许不得用于其它用途!以实际收货产品说明书为准,网站说明书仅供参考。



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